一、常見的蛋白表達系統(tǒng)
為了表達和純化目的蛋白，常見的蛋白表達體系包括大腸桿菌、酵母、昆蟲細(xì)胞、哺乳動物細(xì)胞表達系統(tǒng)和體外翻譯體系等，其中實驗室中比較常用的是大腸桿菌、昆蟲細(xì)胞和哺乳動物細(xì)胞表達細(xì)胞。大腸桿菌可以表達一些對于翻譯后修飾沒有什么要求的蛋白，操作最簡單便捷，適合低成本大量表達目的蛋白；昆蟲細(xì)胞可以表達一些需要簡單的糖基化修飾等的蛋白，操作比大腸桿菌復(fù)雜但比哺乳動物細(xì)胞要簡單一些，目的蛋白的表達純化的成本高于大腸桿菌但低于哺乳動物細(xì)胞；哺乳動物細(xì)胞適合表達需要復(fù)雜翻譯后修飾的蛋白，目的蛋白的表達純化的成本相對較高。體外翻譯系統(tǒng)大多用于蛋白翻譯的研究，僅在特殊情況下才會用于目的蛋白的表達和純化；酵母用于目的蛋白的表達和純化相對比較常見一些，其中獲得的蛋白的修飾程度和成本介于大腸桿菌和昆蟲表達系統(tǒng)之間。昆蟲或者哺乳動物表達系統(tǒng)，相當(dāng)于把生物體作為了反應(yīng)器，用于表達和純化所需的目的蛋白。
產(chǎn)品中包含了大腸桿菌蛋白表達純化系統(tǒng)、昆蟲細(xì)胞蛋白表達純化系統(tǒng)和哺乳動物蛋白表達純化系統(tǒng)。
提供的大腸桿菌蛋白表達純化系統(tǒng)主要采用pET系列質(zhì)粒，轉(zhuǎn)化到BL21系列等菌株中，進行目的蛋白的表達，后續(xù)使用鎳柱或GST柱進行目的蛋白的純化。該系統(tǒng)不僅適合小量目的蛋白的表達純化，也適合較大量的目的蛋白的表達純化。
昆蟲蛋白表達純化系統(tǒng)，可以采用Bac-to-Bac桿狀病毒表達系統(tǒng), 通過LipoInsect™轉(zhuǎn)染試劑感染Sf9等昆蟲細(xì)胞，最終通過鎳柱、GST柱等方法進行目的蛋白的表達和純化。Bac-to-Bac桿狀病毒表達系統(tǒng)是由Luckow等人于1993年發(fā)展的一種快速有效產(chǎn)生重組桿狀病毒的方法，也是到目前為止使用最為廣泛的昆蟲表達系統(tǒng)。
哺乳細(xì)胞表達系統(tǒng)包括小量目的蛋白的表達純化和大量目的蛋白的表達純化兩種。進行小量目的蛋白的表達純化時，通�？梢圆捎胮CMV等系列真核表達載體，使用脂質(zhì)體或磷酸鈣等轉(zhuǎn)染試劑轉(zhuǎn)染細(xì)胞后，進行目的蛋白的表達，隨后可以采用目的蛋白抗體或所帶的標(biāo)簽抗體進行免疫沉淀，也可以考慮采用鎳柱或GST柱進行目的蛋白的純化；進行大量目的蛋白的表達純化時，可采用Lipo293F™轉(zhuǎn)染試劑大量轉(zhuǎn)染293f細(xì)胞，從而實現(xiàn)大規(guī)模的蛋白表達與后續(xù)的純化。

二、昆蟲蛋白表達和純化系統(tǒng)

昆蟲桿狀病毒表達載體系統(tǒng)(Baculovirus Expression Vector Systems, BEVS)是一個二元系統(tǒng)。第一個部分是病毒感染的昆蟲宿主，通常是鱗翅目昆蟲細(xì)胞系，有時也可以是鱗翅目的昆蟲。第二個部分是桿狀病毒表達載體，其功能是將編碼目標(biāo)蛋白的外源基因?qū)�入宿主�?xì)胞中、組裝桿狀病毒并進行目的蛋白的表達。
1.昆蟲細(xì)胞
鱗翅目昆蟲(Order Lepidoptera)包括蛾(moth)和蝴蝶(butterfly)，它們是桿狀病毒家族中多種病毒的宿主。目前已經(jīng)建立了超過250種的昆蟲細(xì)胞株。桿狀病毒表達載體涉及的最常用的鱗翅類昆蟲細(xì)胞株有兩個，其中一個是Sf9, 由Smith和 Summers在1987年亞克隆IPLB-SF-21而建立的。IPLB-SF-21細(xì)胞系是在1977年從草地貪夜蛾(又稱為秋天行軍蟲)蛹的卵巢組織中分離出來的；另外一個是HighFive, 最初是從粉紋夜蛾(又稱為甘藍銀紋夜蛾)(cabbageIooper)的成熟卵巢組織中分離到的細(xì)胞株。

Sf9/Sf21和HighFive兩種細(xì)胞系都能以貼壁或懸浮狀態(tài)生長。通過感染在培養(yǎng)板或培養(yǎng)瓶中生長的 Sf9/Sf21或 HighFive細(xì)胞，可以很方便地實現(xiàn)實驗室規(guī)模的蛋白質(zhì)生產(chǎn)的目的。昆蟲細(xì)胞培養(yǎng)的條件和方法與哺乳動物細(xì)胞的培養(yǎng)方法不太一樣，昆蟲細(xì)胞的培養(yǎng)溫度是25-30℃，最適溫度是28℃而不是37℃；另外，Sf9/ Sf21和HighFive細(xì)胞貼壁不緊, 在傳代培養(yǎng)時不需要EDTA或胰酶(trypsin)處理；昆蟲細(xì)胞的生長也不需要CO2培養(yǎng)箱，因為昆蟲細(xì)胞培養(yǎng)液通常是用磷酸鹽而不是碳酸鹽作為緩沖液。Sf9/Sf21和HighFive細(xì)胞都可以在有或沒有血清的培養(yǎng)液中生長。多種不同的昆蟲細(xì)胞培養(yǎng)液都能夠從多個不同的制造商買到，其中包括ExpressionSystems、Invitrogen(GIB-CO)、HyClone和Sigma-Aldrich。有血清培養(yǎng)液主要有Grace's insect cell culture medium，TNM-FH，IPL-41,TC-100和Schneider's insect medium等，而無血清培養(yǎng)液主要有SF-900II SFM，SF-900III SFM和Express-Five SFM等特別適合蛋白的大規(guī)模表達。需要指出的是，Sf9/Sf21和HighFive細(xì)胞都會傾向于逐漸適應(yīng)某種特定的培養(yǎng)液，如果突然將它們的培養(yǎng)液從有血清培養(yǎng)液變?yōu)闊o血清培養(yǎng)液時往往會導(dǎo)致培養(yǎng)細(xì)胞的損失。因此通常建議采用"緩慢培養(yǎng)液更換法"，如在連續(xù)傳代中，應(yīng)該將無血清培養(yǎng)液的比例從0% 依次升高至25%、50%、75%，直至100%。即使使用這種相對緩慢的血清戒除法，當(dāng)將細(xì)胞剛剛置于不含血清的培養(yǎng)液時，這些細(xì)胞也會經(jīng)歷短暫的生長停止或生長緩慢，但這些細(xì)胞會在新培養(yǎng)液中緩慢生長12天后恢復(fù)至正常的生長速率。"緩慢培養(yǎng)液更換法"不僅可實現(xiàn)從有血清培養(yǎng)液到無血清培養(yǎng)液的轉(zhuǎn)換，還可以用于將昆蟲細(xì)胞從一種無血清培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移到另一種無血清培養(yǎng)液。
昆蟲細(xì)胞可作為桿狀病毒感宿主而進行高水平的外源蛋白的表達，來自昆蟲桿狀病毒表達系統(tǒng)的重組蛋白通常具有正確的翻譯后修飾和生物學(xué)活性，其翻譯后蛋白修飾狀態(tài)與哺乳動物類似，當(dāng)然這種加工與哺乳動物細(xì)胞對蛋白質(zhì)的加工并不總是相同，比較明顯的一個例子就是蛋白的N-糖基化修飾有所不同。Invitrogen將一個最初命名為SfSWT-I的源于Sf9細(xì)胞的轉(zhuǎn)基因昆蟲細(xì)胞系命名為Mimic Sf9, 該細(xì)胞系具有更完整的N-糖基化途徑，在含有血清的培養(yǎng)液中能夠表達出人源化的重組糖蛋白。
2. 昆蟲桿狀病毒表達系統(tǒng)
與大腸桿菌、酵母和哺乳動物細(xì)胞等其它常用的重組蛋白表達系統(tǒng)相比，昆蟲桿狀病毒表達系統(tǒng)具有以下獨特的優(yōu)點：
(1) 與大腸桿菌表達系統(tǒng)相比，對于某些容易在大腸桿菌表達系統(tǒng)中由于二硫鍵錯誤配對或者缺乏蛋白翻譯后修飾(如磷酸化和糖基化等)而形成包涵體的蛋白，在大多數(shù)情況下，在昆蟲表達系統(tǒng)中高水平表達的重組蛋白往往可溶，而且能折疊正確，并且含有對某些蛋白活力所必須的翻譯后修飾(如磷酸化和糖基化等)。
(2) 與酵母和哺乳動物表達系統(tǒng)等其它真核表達系統(tǒng)相比，外源基因表達水平高，非常適應(yīng)大規(guī)模表達所需的高密度懸浮培養(yǎng)，而且比較容易分離純化。
(3) 昆蟲細(xì)胞由于懸浮生長，容易進行放大培養(yǎng)，從而可進行大規(guī)模的重組蛋白表達純化，昆蟲桿狀病毒表達系統(tǒng)廣泛應(yīng)用于科研和工業(yè)生產(chǎn)領(lǐng)域，重組蛋白產(chǎn)量最高可達1g/L。
(4) 昆蟲細(xì)胞可用于同時表達多種重組蛋白，可通過多種重組病毒同時感染昆蟲細(xì)胞或用含有多個表達框的一種病毒感染昆蟲細(xì)胞來實現(xiàn)。所以該系統(tǒng)特別適合表達多亞基的蛋白復(fù)合物以進行蛋白的結(jié)構(gòu)功能研究等。
(5) 生物安全性高。昆蟲桿狀病毒具有嚴(yán)格的宿主范圍，通常僅限于非脊椎動物，因此具有生物安全性高這一特點。
3. Bac-to-Bac桿狀病毒表達系統(tǒng)
Bac-to-Bac桿狀病毒表達系統(tǒng)是由Luckow等人于1993年發(fā)展的一種快速有效產(chǎn)生重組桿狀病毒的方法，也是到目前為止使用最為廣泛的昆蟲桿狀病毒表達系統(tǒng)。該系統(tǒng)主要包括以下兩個組分：(1) 用于插入目的基因的pFastBac載體，在該系列載體中，目的基因的高水平表達由Autographa californica多核多角體病毒(multiple nuclear polyhedrosis virus, AcMNPV)的多角體啟動子(polyhedrin(PH)promoter)驅(qū)動。載體多克隆位點的兩側(cè)均為Tn7元件，同時還含有一個慶大霉素抗性基因(gentamicin resistance gene)和形成mini Tn7所需的SV40 polyA signal。(2)含桿狀病毒穿梭載體bacmid (bMON14272, 136kb)和輔助質(zhì)粒(helper plasmid，用于表達轉(zhuǎn)座必須的轉(zhuǎn)座蛋白) pMON7124的大腸桿菌DH10Bac宿主菌株。Bac-to-Bac昆蟲桿狀病毒表達系統(tǒng)利用遺傳轉(zhuǎn)座(genetic transposition)得到重組病毒。DH10Bac宿主包含的bacmid bMON14272含小型F復(fù)制子，卡那霉素抗性基因，mini-attTn7位點和lacZα互補因子(可通過藍白斑篩選)；輔助質(zhì)粒pMON7124包含四環(huán)素抗性和tnsABCD區(qū)域，該區(qū)域表達轉(zhuǎn)座反應(yīng)所需的轉(zhuǎn)座蛋白。當(dāng)pFastBac重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化進入DH10Bac細(xì)胞后，pFastBac載體上的mini-Tn7位點和DH10Bac宿主菌中bacmid上的mini-attTn7位點之間發(fā)生轉(zhuǎn)座(transposition)，產(chǎn)生重組bacmid。該轉(zhuǎn)座會導(dǎo)致bacmid上的LacZ基因的破壞，因此可以通過在細(xì)菌培養(yǎng)平板上進行藍白斑篩選來鑒別含有重組bacmid的DH10Bac菌落，從白色菌落的DH10Bac克隆中可分離出含有編碼目的基因的重組bacmid DNA，后者進一步感染昆蟲細(xì)胞后可產(chǎn)生含有重組子的桿狀病毒即可啟動外源重組蛋白的表達。表達目的蛋白的桿狀病毒在被擴增和滴度測定后，高滴度的桿狀病毒即可用于感染昆蟲細(xì)胞以進行大規(guī)模的目的蛋白的表達。
4. Bac-to-Bac桿狀病毒表達系統(tǒng)進行目的蛋白表達的實驗步驟
(1)把目的基因克隆至pFastBac系列載體產(chǎn)生重組質(zhì)粒。根據(jù)pFastBac系列載體的多克隆位點選做合適的酶切位點，按照讀碼框插入待表達的目的基因序列。最后通過測序驗證插入序列是否正確。
(2)轉(zhuǎn)化pFastBac重組質(zhì)粒到DH10Bac大腸桿菌中，37℃培養(yǎng)48小時。可以選擇pFastBac1-EGFP (D2802)作為對照質(zhì)粒，可以選購DH10Bac甘油菌(D0346)用于制備感受態(tài)細(xì)胞。轉(zhuǎn)化后利用藍白斑篩選重組菌株。重組菌株由于轉(zhuǎn)座會導(dǎo)致LacZ基因的破壞而呈現(xiàn)白斑，用于藍白斑篩選的LB瓊脂糖平板應(yīng)含有50μg/ml卡那霉素，7μg/ml慶大霉素，10μg/ml四環(huán)素，40μg/ml X-gal和40μg/ml IPTG。
(3)選做：挑取白斑，重新劃線以確認(rèn)獲得的白色克隆是真實的白斑。平板含有50μg/ml卡那霉素，7μg/ml慶大霉素，10μg/ml四環(huán)素，40μg/ml X-gal和40μg/ml IPTG，37℃培養(yǎng)過夜。
(4)挑取白斑，培養(yǎng)過夜。須使用含有50μg/ml卡那霉素，7μg/ml慶大霉素和10μg/ml四環(huán)素的LB培養(yǎng)液。
(5)小量抽提試劑盒提取重組bacmid DNA。推薦使用桿狀病毒穿梭載體bacmid小量提取試劑盒(D0031)提取重組bacmid DNA。重組Bacmid DNA應(yīng)該分裝凍存于-20℃，因為反復(fù)凍融會導(dǎo)致bacmid斷裂等從而顯著降低其轉(zhuǎn)化效率。如兩星期內(nèi)使用，可保存于4℃。
(6) 重組bacmid的PCR鑒定。利用 PCR反應(yīng)對陽性克隆進行進一步的驗證。PCR 反應(yīng)所用引物為pUC/M13 forward primer (5'-CCCAGTCACGACGTTGTAAAACG-3')，和pUC/M13 reverse primer (5'-AGCGGATAACAATTTCACACAGG-3')。沒有發(fā)生轉(zhuǎn)座的bacmid其所擴增所產(chǎn)生的片段長度為350bp，重組bacmid擴增所產(chǎn)生的片段的長度為350bp加上插入片段的長度。
(7)重組bacmid轉(zhuǎn)染昆蟲細(xì)胞。推薦使用生產(chǎn)的昆蟲轉(zhuǎn)染試劑LipoInsect™ (C0551)，將提取的重組Bacmid轉(zhuǎn)染進入昆蟲細(xì)胞。建議使用Grace's Insect Cell Culture Medium培養(yǎng)液進行轉(zhuǎn)染，轉(zhuǎn)染時如果使用的昆蟲轉(zhuǎn)染試劑LipoInsect™，實驗步驟請嚴(yán)格按照其說明書進行。轉(zhuǎn)染后，28℃培養(yǎng)24小時，細(xì)胞和細(xì)胞核開始變大；轉(zhuǎn)染后24-72小時，細(xì)胞慢慢停止生長、脫落，細(xì)胞表面長出芽孢狀結(jié)構(gòu)；轉(zhuǎn)染后72小時候細(xì)胞開始裂解，此時病毒開始釋放到培養(yǎng)液中。如果同時轉(zhuǎn)染了pFastBac1-EGFP (D2802)，在轉(zhuǎn)染72小時后可以觀察到大部分細(xì)胞呈現(xiàn)綠色熒光，轉(zhuǎn)染后96小時幾乎所有的細(xì)胞都呈現(xiàn)綠色熒光，這樣可以作為整個病毒包裝體系的陽性對照。
(8)收集P1代桿狀病毒。轉(zhuǎn)染96小時后，收集培養(yǎng)液上清，500g離心5分鐘以沉淀細(xì)胞和細(xì)胞碎片，取上清即為P1代桿狀病毒。此時病毒滴度通常為1X106-1X107pfu/ml。P1代病毒可短期保存于4℃，或分裝于含2% FBS的培養(yǎng)液中后在-80℃較長期保存。反復(fù)凍融會大大降低病毒活力，其滴度有可能降低10至100倍。
(9)P1代桿狀病毒的擴增。P1代病毒再次感染昆蟲細(xì)胞可獲得P2代病毒。如果采用懸浮培養(yǎng)的昆蟲細(xì)胞進行病毒擴增，建議使用10ml培養(yǎng)液并且控制細(xì)胞密度為2X106/ml；如果使用6孔板貼壁培養(yǎng)的細(xì)胞進行擴增，細(xì)胞密度應(yīng)為2X106/well，MOI (multiplicity of infection)為0.05-0.1(即每100個細(xì)胞用5-10pfu的病毒進行感染)。28℃培養(yǎng)48-72小時后，70-80%的細(xì)胞死亡時，收集細(xì)胞和上清，500g離心5分鐘，取上清即為P2代病毒。此時病毒滴度約為1X107-1X108pfu/ml�？墒占�本步驟離心后的細(xì)胞碎片沉淀，加入適量的1X SDS-PAGE蛋白上樣緩沖液(P0015A)，裂解后進行SDS-PAGE凝膠電泳及Western blot檢測，以分析確定目的蛋白是否已經(jīng)正常表達。
(10)選做：P2代桿狀病毒的擴增。如果P2代病毒滴度仍然偏低，可對P2代病毒再次進行擴增，擴增方法同P2代病毒的擴增方法。P2代病毒感染昆蟲細(xì)胞后最終會獲得滴度更高的P3代病毒。
(11)病毒感染昆蟲細(xì)胞進行目的蛋白的大規(guī)模表達。可選擇Sf9/Sf1/HighFive的任何一種細(xì)胞株進行蛋白大規(guī)模表達。但如果表達的是分泌蛋白，建議選用HighFive。建議在昆蟲細(xì)胞的對數(shù)生長期進行病毒感染，此時細(xì)胞密度在1X106/ml -2X106/ml為佳，MOI可從5-10開始嘗試。建議在不同的時間階段，如感染后24、48、72或96小時收集細(xì)胞，裂解細(xì)胞，SDS-PAGE并進行Western Blot檢測以確定最佳的停止蛋白表達的時間。因為昆蟲細(xì)胞內(nèi)有很多蛋白酶，表達時間過長會導(dǎo)致目的蛋白的降解。分泌蛋白的表達高峰通常在感染后30-72小時，而非分泌蛋白的表達高峰通常在感染后48-96小時。
5. 目的蛋白的純化
利用pFastBac1進行目的蛋白的表達的時候，根據(jù)蛋白純化方式的需要以及融合表達目的蛋白以提高其表達量的需要，可以在質(zhì)粒構(gòu)建時添加His標(biāo)簽或GST標(biāo)簽。為了防止額外添加的His和GST等蛋白標(biāo)簽影響目的蛋白的生物學(xué)功能和結(jié)構(gòu)研究，可在融合蛋白和標(biāo)簽之間添加蛋白酶酶切位點，如TEV或PreScission的酶切位點。昆蟲表達蛋白的純化步驟和大腸桿菌表達蛋白的純化步驟基本一致。如果蛋白主要以可溶形式表達，離心收集昆蟲細(xì)胞，超聲裂解細(xì)胞，但由于昆蟲細(xì)胞內(nèi)蛋白酶種類比較多，需要添加各種蛋白酶抑制劑。離心收集超聲后上清，使用鎳柱或GST柱等純化目的蛋白。推薦使用BeyoGold™ His-tag Purification Resin (P2210/P2218/P2220)進行His標(biāo)簽蛋白的純化，推薦使用BeyoGold™ GST-tag Purification Resin(P2250/P2251/P2253/P2255) 進行GST標(biāo)簽蛋白的純化，同時可以利用離子交換、分子篩層析等進一步純化目的蛋白�？梢允褂肞reScission Protease (P2302/P2303)或者TEV Protease (P2307/P2308)進行柱上酶切或者洗脫后酶切(如果使用TEV Protease，我們推薦使用洗脫后酶切)以取代蛋白標(biāo)簽。純化獲得的蛋白，可以添加適量甘油后保存，或者如果有需要也可以適當(dāng)濃縮后保存等。​