豬布魯氏桿菌染料法熒光定量PCR試劑盒具有下列特點：
1.即開即用，用戶只需要提供 DNA 模板。
2.引物根據(jù) EB 病毒專一區(qū)設計，特異性高。
3.熒光定量PCR 檢測，比常規(guī) PCR 更加靈敏。
4.一管式閉管操作，降低了交叉污染。
5.本試劑盒足夠 50 次 20μL 反應體系的熒光定量 PCR。
本產(chǎn)品只適用于科研，不能用于臨床診斷
| 成分 | 十孔盒包裝 |
| 2×qPCR Magic Mix | 500 μL（棕色管） |
| 熒光PCR 專用模板稀釋液 | 1 mL（黃蓋） |
| 病毒染料法 qPCR 引物混合液 | 100 μL（白蓋） |
| 病毒染料法 qPCR 陽性對照 (1×10E8 拷貝/μL) | 50 μL（黃蓋） |
| 使用手冊 | 1 份 |
運輸及保存:低溫運輸、-20℃保存，有效期一年。
自備試劑:DNA 模板、超純水、10×ROX（根據(jù)機型決定，具體見使用方法）。
使用方法 一、稀釋 PCR 陽性對照（以 10E2-10E7 拷貝/μL 這 6 個 10 倍稀釋度為例）
1. 注意：由于陽性對照濃度非常高，因此下列稀釋操作一定要在獨立的區(qū)域進行，千萬不能污染樣品或本試劑盒的其他成分）。為增加產(chǎn)品穩(wěn)定性和避免擴散傳染性病原，本產(chǎn)品不提供活體樣品做陽性對照，只提供可以直接使用的 DNA 片段作為陽性對照。
2. 標記 6 個離心管，分別為 7，6，5，4，3，2。
3.用帶芯槍頭分別加入 45 μL 熒光 PCR 專用模板稀釋液（最好用帶芯槍頭，下同）。
4.在 7 號管中加入 5 μL 1×10E8 拷貝/μL 的陽性對照，充分震蕩 1 分鐘，得 1×10E7 拷貝/μL 的陽性對照。放冰上待用。
5.換槍頭，在 6 號管中加入 5 μL 1×10E7 拷貝/μL 的陽性對照(上步稀釋所得)，
充分震蕩 1 分鐘，得 1×10E6 拷貝/μL 的陽性對照。放冰上待用。
6.換槍頭，在 5 號管中加入 5 μL 1×10E6 拷貝/μL 的陽性對照到 5 號管中，充分震蕩 1 分鐘，得 1×10E5 拷貝/μL 的陽性對照。放冰上待用。
7.重復上面的操作直到得到 6 個稀釋度的陽性對照。放冰上待用。二、樣品 DNA 的制備
8.如果有 N 個樣品，必須設置 N+2 個提取，多出的一個是 PC（樣品制備陽性對照），
一個是 NC（樣品制備陰性對照）�？梢杂� 10μL PCR 陽性對照的 10000 倍稀釋的（稀釋后濃度為 1×10E4 拷貝/μL，10μL 相當于 1 萬拷貝，可以將 10μL 原液加入到 990μL 自備 TE 溶液中，充分混勻，此為 100 倍稀釋液。再取 10μL 此稀釋液加入到 990μL 自備 TE 溶液中，充分混勻，此為 10000 倍稀釋液）再加上一定量的水作為制備的陽性對照（加水后其總體積跟樣品一樣，樣品體積多少取決于所用試劑盒的要求）�？梢杂盟鳛橹苽涞年幮詫φ�。制備所得成為樣品 DNA。
9.用自選方法純化 N+2 個樣品的 DNA，本試劑盒跟市場上大多數(shù)核酸提取試劑盒兼容。
三、設置 qPCR 反應（20 μL 體系，在樣品制備室進行）
10.如果做定量分析并且只做 1 次重復，則標記 N+9 個PCR 管，其中 N+2 個用于上步得到的 N+2 個樣品，1 個用于 PCR 陰性對照，6 個用于標準曲線。如果做定性分析，并且只做 1 次重復，則標記 N+4 個PCR 管，其中 N+2 個用于上步得到的N+2 個樣品，1 個用于PCR 陰性對照（用水做模板），1 個用于PCR 陽性對照（用第 4 號陽性對照稀釋液，濃度為 14810 拷貝/μL）。下面只描述定量分析的步驟， 定性分析只是把 6 個標曲反應縮減成 1 個，其余不變。
11.在標記管中按下表加入各成分（本表只列出一次重復。樣品管和陰性對照設置完畢
后才設置陽性對照，并且陽性對照樣品要等所有管子蓋上蓋子儲存好后最后加）
| 成分 | 樣品管 N+2 個 | PCR 陰性 對照管 | PCR 陽性 對照管（2-7 管） |
| 2×qPCR MagicMix | 10 μL | 10 μL | 各 10 μL |
| 染料法qPCR 引物混 合液 | 2 μL | 2 μL | 各 2 μL |
| 自備 10×ROX (見注) | 2 μL | 2 μL | 各 2 μL |
| N+2 待測樣品 cDNA 模板 | 6 μL | - | - |
| 自備超純水 | - | 6 | - |
| 第 7 步所得 PCR 陽性對照稀釋液（2-7 號） | - | - | 各 6μL（2 號樣到 2 號管，3 號樣到 3 號管…） |
注:僅 ABI7500、7700 和 7900 儀器需要使用ROX 作為對照，其他熒光 PCR 儀器（如 iCycler IQ、MJ Option、MJ Chromo4、MX3000、MX4000、RotorGene 3000、RotorGene 6000 和 LightCycler480）不需要使用 ROX，則用水替代。
12. 蓋上蓋子后上機，按下面參數(shù)進行 PCR（具體 PCR 參數(shù)可以根據(jù)儀器不同而自行優(yōu)化）。
四、數(shù)據(jù)處理
13.如果把豬布魯氏桿菌染料法熒光定量PCR試劑盒軸，繪制標準曲線。再以待測樣品的 Ct 值從標準曲線上推算出樣品 cDNA 濃度的log 值，再推算出其濃度。
14.如果把本試劑盒用于定性檢測，只判斷陽性或陰性，則陰性對照 Ct 必須大于或等于 36。陽性對照必須有熒光對數(shù)增長，有典型擴增曲線，Ct 值應該小于或等于30。對待測樣品，如果其 Ct 大于或等于 34 則為陰性，如果小于或等于 30 則為陽性。如果在 30-34 之間，則重復一次。若重復結(jié)果 Ct 值小于 34，擴增曲線有明顯起峰，該樣本判斷為陽性，否則為陰性軸，繪制標準曲線。再以待測樣品的 Ct 值從標準曲線上推算出樣品 cDNA 濃度的log 值，再推算出其濃度。
