Western Blot 檢測試劑盒說明書(簡化版)
(YW001-1)
【產(chǎn)品簡介】
蛋白印跡,也稱 Western,Western blot、Western blotting、Western 印跡,簡稱 WB,是用抗體檢測蛋白的重要方法之一。在蛋白質(zhì)進(jìn)行 SDS-PAGE 電泳后,利用 Western Blotting 檢測試劑盒可以完成轉(zhuǎn)膜,膜的封閉,一抗孵育,二抗孵育和 ECL 化學(xué)發(fā)光檢測的工作。
【試劑盒組份】
組份 | W001-1-1 10T | W001-1-2 20T |
儲存溫度 |
PVDF 膜(5cm×7cm) | 10 張 | 20 張 | RT |
10×轉(zhuǎn)移緩沖液 | 500 ml | 500 ml ×2 | 4℃ |
Tween 20 | 1.5 ml | 3.0 ml | 4℃ |
10×洗滌液 | 250 ml | 500 ml | 4℃ |
BSA | 6g | 12g | 4℃ |
二抗(兩種供選擇) | |||
羊抗小鼠 IgG-HRP | 20ul | 40ul | -20℃ |
羊抗兔 IgG-HRP | 20ul | 40ul | -20℃ |
ECL 化學(xué)發(fā)光試劑 | |||
A 液 (避光) | 5 ml | 10 ml | 4℃ |
B 液 | 5 ml | 10 ml | 4℃ |
【自備儀器和試劑】
可調(diào)移液器、垂直板電泳儀、X光片、雙蒸水、一抗,無水甲醇,顯影液,定影液
【保存條件】
PVDF膜室溫保存;二抗-20℃保存;其余組份4℃保存。
【操作步驟】
1、 工作液的準(zhǔn)備:
轉(zhuǎn)膜緩沖液配制(1000ml):
100ml 10×轉(zhuǎn)移緩沖液+700ml 去離子水+200ml 無水甲醇,可重復(fù)使用一次。洗滌液的配制(300ml): 30ml 10×洗滌液+270ml 去離子水+150ul Tween 20
封閉液的配制(20ml): 20ml 洗滌液+0.6g BSA
2、 轉(zhuǎn)膜
a、PVDF 膜及濾紙的預(yù)處理:
轉(zhuǎn)膜前,裁剪與膠大小一致的 PVDF 膜泡入甲醇中,時(shí)間約為 1min,小心取出膜放入蒸餾水中浸泡 2min,然后把膜放置盛有轉(zhuǎn)膜緩沖液的小槽中平衡 15min,同時(shí)把已裁剪好的濾紙(與膠大小一致)和海綿也放入盛有轉(zhuǎn)膜緩沖液的小槽中平衡 15min。
b、 轉(zhuǎn)膜
(1) 、干式電轉(zhuǎn)印
將轉(zhuǎn)印槽陰極平放工作臺上,并在上面加三張經(jīng)轉(zhuǎn)膜緩沖液平衡好的 1mm 厚的濾紙,將經(jīng)轉(zhuǎn)膜緩沖液平衡好的 PVDF 膜放在濾紙上,再將凝膠平放在 PVDF 膜上,最后在凝膠上加蓋三層經(jīng)轉(zhuǎn)膜緩沖液平衡好 1mm 厚的濾紙, 接通電源,15V 進(jìn)行恒壓,轉(zhuǎn)膜的時(shí)間根據(jù)蛋白分子量的大小而調(diào)整,分子量為40-100KD 的蛋白轉(zhuǎn)膜30-45min。
(2) 、濕式電轉(zhuǎn)印
打開電轉(zhuǎn)夾,每側(cè)墊上一塊專用的轉(zhuǎn)膜緩沖液平衡好的海面墊,再各放三塊經(jīng)轉(zhuǎn) 膜緩沖液平衡好的濾紙,濾紙與海面墊大小相同或與 PVDF 膜、凝膠大小相同均可, 將凝膠平放在陰極側(cè)濾紙上,最后將經(jīng)轉(zhuǎn)膜緩沖液平衡好 PVDF 膜平放在凝膠上,按 照 (-) 夾板-海棉-濾紙-凝膠-PVDF 膜-濾紙-海綿-夾板 (+)裝好,除盡氣泡,夾好電轉(zhuǎn) 印夾。 電泳槽(槽的一邊放一塊冰來降溫)加滿預(yù)冷的轉(zhuǎn)膜緩沖液,插入電轉(zhuǎn)印夾,連接好電極,接通電流,轉(zhuǎn)印夾的 PVDF 膜應(yīng)對電泳槽的正極, 100v 恒壓進(jìn)行轉(zhuǎn)膜,,轉(zhuǎn)膜的時(shí)間根據(jù)蛋白分子量的大小而調(diào)整,分子量為 40-100KD 的蛋白轉(zhuǎn)膜 60min。
3、 膜的封閉
轉(zhuǎn)膜完畢后,立即把蛋白膜放置到預(yù)先準(zhǔn)備好的 Western 洗滌液中,漂洗 1-2 分鐘,以洗去膜上的轉(zhuǎn)膜液。從轉(zhuǎn)膜完畢后所有的步驟,一定要注意膜的保濕,避免膜的干燥,否則極易產(chǎn)生較高的背景。
用滴管等吸盡洗滌液,加入 Western 封閉液,在搖床上緩慢搖動,室溫封閉 60 分鐘。對于一些背景較高的抗體,可以 4℃封閉過夜。在整個(gè) Western 過程中我們推薦使用側(cè)擺搖床或類似儀器,側(cè)向擺動速度比較緩慢,而且也容易讓溶液覆蓋蛋白膜。
4、 一抗孵育
參考一抗的說明書,按比例用封閉液稀釋一抗?捎 10×10cm 雜交袋進(jìn)行一抗孵育,所需一抗孵育約為 1.0ml,室溫或 4℃在側(cè)擺搖床上緩慢搖動孵育一小時(shí)。如果效果不佳,可以在 4℃緩慢搖動孵育過夜。取出膜,加入洗滌液,在側(cè)擺搖床上緩慢搖動洗滌 10 分鐘。吸盡洗滌液后,再加入洗滌液,漂洗 3~5 次,每次 5-10 分鐘。如果結(jié)果背景較高可以適當(dāng)延長漂洗時(shí)間并增加漂洗次數(shù)。Western 結(jié)果通常需要提供內(nèi)參作為對照,通常可以選用 Tubulin 抗體或 Actin 抗體,進(jìn)行內(nèi)參檢測。
5、 二抗孵育
根據(jù)一抗的類型,選擇合適的二抗并參考二抗的說明書,例如,一抗是小鼠來源的 IgG,則二抗需選擇抗小鼠 IgG 的二抗; 并按照適當(dāng)比例用封閉液稀釋辣根過氧化物酶(HRP)
標(biāo)記的二抗(1:10000 左右)?捎 10×10cm 雜交袋進(jìn)行二抗孵育,所需二抗孵育約為 1.0ml,室溫或 4℃在側(cè)擺搖床上緩慢搖動孵育一小時(shí)。加入洗滌液,在側(cè)擺搖床上緩慢搖動洗滌 10 分鐘。用滴管吸盡洗滌液后,再加入洗滌液,漂洗 3~5 次,每次 5-10 分鐘。如果顯色結(jié)果背景較高,可以適當(dāng)延長洗滌時(shí)間并增加洗滌次數(shù)。
6、 ECL 化學(xué)發(fā)光檢測
a、 ECL 工作液的配制:
取 1.5ml 的 eppendorf 管,加入 500μl A 液和 500μl B 液,然后加入 1μl 增強(qiáng)劑,混勻后即為 ECL 工作液(配制后請盡快使用)。用平頭鑷將膜取出,用吸水紙略吸去過多的液體(切勿接觸膜的蛋白面),然后置于一潔凈保鮮膜上。
b、 根據(jù)膜的大小,按每 10 平方厘米膜加 1ml ECL 工作液的比例,滴加 ECL 工作液到膜上,確保使工作液均勻覆蓋在膜上,放置 1-2 分鐘。
c、 取膜,棄 ECL 工作液,用吸水紙略吸去過多的液體。將膜放在兩片保鮮膜中間,小心趕盡氣泡。
d、 將膜固定于片夾內(nèi)。暗室內(nèi)壓片 1 分鐘,立即顯影定影,根據(jù)結(jié)果再調(diào)整壓片時(shí)間。或直接分別壓片 30 秒,1,3,5 分鐘,然后一起顯影定影觀察結(jié)果。