| 傳代方法 | 第一次建議1:2傳代 | 凍存條件 | 細(xì)胞庫無血清凍存液 |
| 細(xì)胞描述 | 在1996年從患有彌漫性大B細(xì)胞淋巴瘤的29歲女性的腹水中建立，該女性在16年前被診斷患有晚期霍奇金淋巴瘤，并且在多次化療和放療方案后復(fù)發(fā)數(shù)次以完成緩解；文獻(xiàn)中描述的細(xì)胞過表達(dá)BCL2、BCL6和p53歸入ABC樣淋巴瘤亞型(活化B細(xì)胞)。外顯子組和RNA序列數(shù)據(jù)是可用的(參見參考文獻(xiàn)18187和外顯子序列和RNA序列).另外，請注意:細(xì)胞系U-2932包含兩個不同的亞群，通過CD19、CD20和CD38的表面染色可見(參見參考文獻(xiàn)18133)；建議持續(xù)監(jiān)測亞群，以防止傳代過程中的意外損失 倍增時間~24-30小時 細(xì)胞篩選：該細(xì)胞為已經(jīng)穩(wěn)定轉(zhuǎn)染GFP的細(xì)胞，隨細(xì)胞傳代次數(shù)的增加，其GFP熒光強(qiáng)度會逐漸減弱。若實驗要求需要維持熒光強(qiáng)度，可以加入嘌呤霉素進(jìn)行再次篩選。 細(xì)胞經(jīng)過20μg/ml嘌呤霉素篩選，平時培養(yǎng)可維持10μg/ml嘌呤霉素 本庫的細(xì)胞僅用于科研工作，未經(jīng)許可不得用于其他目的，使用者不得將本庫細(xì)胞轉(zhuǎn)讓給第三者。 | ||
| 培養(yǎng)備注 | 用無菌離心管收集瓶子培養(yǎng)基，留作過渡培養(yǎng) | ||
收到后處理
細(xì)胞在培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)至良好狀態(tài)后灌滿完全培養(yǎng)液并封好瓶口是細(xì)胞運(yùn)輸?shù)淖詈棉k法。收到細(xì)胞回到自己的實驗室后，先打開外包裝，用75%酒精噴灑整個瓶消毒后放到超凈臺內(nèi)，嚴(yán)格無菌操作，培養(yǎng)箱靜置2-4小時。鏡下觀察：未超過80%匯合度時，可將瓶裝的完全培養(yǎng)液收集至離心管中，加入6ml完全培養(yǎng)基，放入37℃、5%CO2孵箱培養(yǎng)；超過80%匯合度時，根據(jù)情況傳代或者凍存，具體操作見細(xì)胞培養(yǎng)步驟。（注意發(fā)貨的是密封培養(yǎng)瓶的話，放入培養(yǎng)箱培養(yǎng)記得培養(yǎng)瓶蓋子擰松，傳代后建議一瓶用原瓶里面的完全培養(yǎng)基，另外一瓶用自己配的完全培養(yǎng)基）
細(xì)胞培養(yǎng)步驟
一、復(fù)蘇細(xì)胞：將含有1mL細(xì)胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍，加入5mL培養(yǎng)基混合均勻。在1000RPM條件下離心5分鐘，棄去上清液，補(bǔ)加4-6mL完全培養(yǎng)基后吹勻。然后將所有細(xì)胞懸液加入培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)過夜（或?qū)⒓?xì)胞懸液加入6cm皿中），培養(yǎng)過夜。第二天換液并檢查細(xì)胞密度。
二、細(xì)胞傳代：如果細(xì)胞密度達(dá)80%-90%，即可進(jìn)行傳代培養(yǎng)。
a）、對于貼壁細(xì)胞，傳代可參考以下方法：
1. 棄去培養(yǎng)上清，用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細(xì)胞1-2次。
2. 加1-2ml消化液（0.25%Trypsin-0.53mM EDTA）于培養(yǎng)瓶中，置于37℃培養(yǎng)箱中消化1-2min，然后在顯微鏡下觀察細(xì)胞消化情況，若細(xì)胞大部分變圓并脫落，迅速拿回操作臺，輕敲幾下培養(yǎng)瓶后加5ml以上含10%血清的完全培養(yǎng)基終止消化。
3.輕輕吹打細(xì)胞，完全脫落后吸出，在1000RPM條件下離心8-10分鐘，棄去上清液，補(bǔ)加1-2mL培養(yǎng)液后吹勻。
4. 按5-6ml/瓶補(bǔ)加培養(yǎng)液，將細(xì)胞懸液按1：2的比例分到新的含5-6 ml培養(yǎng)液的新皿中或者瓶中。
b）、對于懸浮細(xì)胞，傳代可參考以下方法：
方法一：收集細(xì)胞，1000RPM條件下離心8-10分鐘，棄上清液，補(bǔ)加1-2ml培養(yǎng)液后吹勻，將細(xì)胞懸液按1:2到1:5的比例分到新的含8ml培養(yǎng)基的新皿中或瓶中。
方法二：可選擇半數(shù)換液方式，棄半數(shù)培養(yǎng)基后，將剩余細(xì)胞懸起，將細(xì)胞懸液按1:2到1:3的比例分到新的含8ml培養(yǎng)基新皿中或者瓶中。
PS：若客戶收到2ml小管細(xì)胞，收到細(xì)胞后，用75%酒精噴灑整個管子消毒后放到超凈臺或安全柜內(nèi)，嚴(yán)格無菌操作；將小管細(xì)胞轉(zhuǎn)移至T25培養(yǎng)瓶或6cm培養(yǎng)皿，加入5ml左右完全培養(yǎng)基混勻，放入培養(yǎng)箱過夜培養(yǎng)后查看細(xì)胞密度：若密度未超過80%，換液繼續(xù)培養(yǎng)，視情況傳代或者凍存。若密度超過80%，可直接進(jìn)行傳代（方法同上）。
三、細(xì)胞凍存：（注：非無血清凍存液方法，無血清凍存液方法請參考我司官網(wǎng)貨號：C7001）
1、細(xì)胞生長至覆蓋培養(yǎng)瓶的80%面積時，棄25cm2培養(yǎng)瓶中的培養(yǎng)液，用PBS清洗細(xì)胞一次；
2、添加0.25%胰蛋白酶消化液約1ml至培養(yǎng)瓶中，倒置顯微鏡下觀察，待細(xì)胞回縮變圓后加入完全培養(yǎng)液終止消化，輕輕吹打細(xì)胞使之脫落，然后將懸液轉(zhuǎn)移至15ml離心管中，1000rpm離心5min；
3、用適量的凍存液重懸細(xì)胞，并放置于凍存管中；
4、先將細(xì)胞凍存管放置于-20℃ 1.5h，然后將其移入-80℃。
四：懸浮細(xì)胞傳代培養(yǎng)
懸浮細(xì)胞的傳代可通過補(bǔ)加或置換新鮮培養(yǎng)基的方式來完成，
具體做法如下：
1. 取出少量細(xì)胞懸液進(jìn)行細(xì)胞計數(shù)及活力檢測，當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)到×106
cells/mL 時，進(jìn)行細(xì)胞傳代培養(yǎng)。
2. 取足量細(xì)胞加入到盛有新鮮培養(yǎng)基的培養(yǎng)瓶中，將細(xì)胞密度維持在 ×105cells/mL。
3. 將培養(yǎng)瓶豎直放置于含有5%培養(yǎng)基換液: 每隔 2 至 3 天。
注意：
培養(yǎng)瓶應(yīng)使用帶濾膜瓶蓋，以保持培養(yǎng)基中的空氣和懸浮細(xì)胞傳代培養(yǎng)該細(xì)胞系培養(yǎng)所用基本培養(yǎng)基為 RPMI1640,配置完全培養(yǎng)基時需加入15%FBS，1%Anti-Anti。
細(xì)胞凍存液，請使用產(chǎn)品： Cryo Frozen Medium (Cat#CTCC-002-002)離心收集細(xì)胞后，加入適量凍存液（每管細(xì)胞凍存量達(dá)到10的6次方），將凍存管放入凍存盒置于負(fù)80冰箱，24h后將凍存管轉(zhuǎn)入液氮長期保存。
