一 、產品詳情
| 傳代方法 | 1:2~1:4傳代，每2～3天傳代或換液一次。 | 凍存條件 | 細胞庫無血清凍存液 |
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細胞株構建流程
| 1.1.構建目的基因過表達慢病毒重組質粒，并包裝慢病毒；
2.慢病毒以合適的MOI值轉導靶細胞；
3.用最佳濃度藥物對細胞株進行篩選，獲得混合穩(wěn)轉細胞株；
4.穩(wěn)轉細胞株質檢（COA）。 | ||
| 細胞備注 | 如混合穩(wěn)轉細胞株帶抗性基因，建議每傳8～10代用相應抗性藥物篩選一次（6μg/mL）；或在細胞培養(yǎng)過程中添加適當濃度的抗性藥物以維持細胞株陽性率（0.6μg/mL）。 | ||
二、細胞到貨處理
常溫到貨細胞:T25細胞培養(yǎng)瓶寄送活細胞（細胞處于培養(yǎng)液中）的處理方法
1.觀察細胞培養(yǎng)瓶是否完好，培養(yǎng)液是否有漏液、渾濁等現象。若有，請拍照，并及時與技術支持聯系。
2.用75%酒精擦拭細胞培養(yǎng)瓶表面，顯微鏡下觀察細胞狀態(tài)。若因運輸問題，部分貼壁細胞從瓶壁脫落,先不要打開培養(yǎng)瓶蓋，將細胞置于細胞培養(yǎng)箱內靜置培養(yǎng)2～4小時，以便穩(wěn)定細胞狀態(tài)。
3.靜置完成后，取出細胞培養(yǎng)瓶，鏡檢、拍照，記錄細胞狀態(tài)，如有異�，F象，例如污染，細胞狀態(tài)差等，請拍照留證并及時與技術支持聯系。
4.僅留適量細胞培養(yǎng)液（棄去多余），然后將細胞置于37°C，5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。
5.根據細胞習性及時換液、傳代、凍存細胞。
凍存管寄送活細胞（細胞處于全血清中）的處理方法：
1.用75%酒精徹底消毒細胞凍存管，然后在超凈工作臺將細胞懸液轉移至15mL無菌離心管，500g，室溫離心5min。
2.棄血清，用完全培養(yǎng)基重懸細胞沉淀。
3.將細胞接種于合適的細胞培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶，然后置于37°C，5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。
4.次日觀察細胞形態(tài)，如有異常現象，例如污染，細胞狀態(tài)差等，請拍照留證并及時與技術支持聯系。
5.根據細胞習性及時換液、傳代、凍存細胞。
干冰運輸細胞
1.將細胞從干冰中取出后立即置于37°C水浴，輕輕轉動凍存管，直至管內細胞完全融化（最好在1～2min內解凍）。
2.將凍存管轉移到超凈工作臺，用75%酒精徹底消毒凍存管。
三、細胞培養(yǎng)
1、細胞復蘇將含有1mL細胞懸液的凍存管在37°C水浴中快速搖晃至溶解，然后在超凈工作臺將細胞轉移至15mL無菌離心管，加入4mL培養(yǎng)基或無菌PBS混合均勻，室溫，500g，離心5min，棄上清液，用完全培養(yǎng)基重懸細胞，將細胞移入培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿培養(yǎng)，第二天更換培養(yǎng)液并檢查細胞生長情況。
2、細胞傳代
貼壁細胞傳代：當細胞密度約80%時，可進行傳代培養(yǎng)：吸出原培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基，PBS緩沖液潤洗細胞兩次，加2~3mL0.25%胰酶進行消化（注意根據實際情況，把握消化時間）。
鏡下觀察消化情況，在細胞邊緣縮小，貼壁松動時（可用吸管吸起些許胰酶輕輕吹打細胞層某處，即可肉眼可見細胞層脫落，或吹打后鏡下觀察吹打處，即消化完成，否則繼續(xù)消化）直接吸掉胰酶，加3~4mL完全培養(yǎng)基，輕輕吹打細胞層，把細胞層吹落，吹散。取部分細胞懸液轉移至新的培養(yǎng)皿中，添加適當的完全培養(yǎng)基，把細胞懸液打勻，于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
懸浮細胞傳代：當細胞密度約80%時，可進行傳代培養(yǎng)：直接將原培養(yǎng)液和細胞一起轉移至15mL或50mL無菌離心管，400～500g室溫離心5min，吸掉培養(yǎng)基，用新鮮完全培養(yǎng)基重懸細胞根據細胞生長特性，按合適比例傳代細胞，將細胞懸液轉移至新的培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶，將細胞置于37°C培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
3、細胞凍存收集細胞，500g，離心5min，棄上清液，加入無血清凍存液輕輕懸浮細胞，移入凍存管后進行凍存。
使用須知
1.本產品僅供購買方單方使用，不得向任何第三方贈送、轉讓或銷售；
2.本產品僅供實驗室和體外研究使用，不能用于任何臨床檢驗、診斷、治療，或任何非法用途；
3.收貨48h內如若發(fā)現異常，請及時聯系售后，逾期視為收貨良好；
4.請嚴格按照本說明書操作，否則造成細胞失活等情形，不予提供補發(fā)服務。
